background image
mutated to non-phosphorylatable alanine residues (AAA-
Cdc6). Similar results were seen in U2OS cells. These data indi-
cate that knockdown of PR70 results in an increase in the levels
of endogenous and exogenous Cdc6 that is dependent on the
presence of phosphorylatable residues at the N-terminal phos-
phorylation sites.
The effects of overexpressing PR70 on Cdc6 levels were also
determined. When HeLa cells were transfected with expression
plasmids containing the CMV promoter, FLAG-tagged PR70
was expressed at levels 5- to 10-fold higher than the endoge-
nous protein (not shown). Co-expression of CDK2 and Cdc6
caused a substantial increase in Cdc6 levels as reported previ-
ously (15). Expression of wild-type PR70 caused an increase in
the levels of both co-transfected and endogenous Cdc6 (Fig.
8A). Expression of the
⌬N3 or EF1/2 mutants, which cannot
interact with the AC core dimer but bind to Cdc6, also
increased the levels of Cdc6. In contrast, expression of the
⌬C
mutant, which binds to the AC core dimer but not to Cdc6, had
Luc
PR70
Luc
Luc
Luc
PR70
PR70
PR70
EV
wtCdc6 DDD-Cdc6 AAA-Cdc6
GPDH
siRNA
plasmid
GFP-Cdc6
B
EV
wtCdc6 DDD-Cdc6 AAA-Cdc6
PR70 siRNA
C
Luc siRNA
plasmid
D
A
Luc
PP2A-C
Mock
PP5
Cdc6
PP2A-C
PP5
siRNA
PR70
Cdc6
PR70
Actin
Luc
Mock
PR70-1
PR70-2
siRNA
FIGURE 7. Knockdown of PR70 increases the levels of Cdc6. A, HeLa cells were
mock transfected (Mock) or transfected with control (Luc), PP2A catalytic subunit
(PP2A-C), or PP5 (PP5) siRNA. Cells were harvested 48 h after transfection and
immunoblotted with anti-Cdc6, PP2A-C, PR70, or PP5 antibodies. B, HeLa cells
were mock transfected (Mock) or transfected with control (Luc), PR70-1, or PR70-2
siRNA. Cells were harvested 48 h after transfection and immunoblotted with anti-
Cdc6, PR70, or actin (as a loading control) antibodies. C, HeLa cells were co-trans-
fected with control or PR70-1 siRNA and plasmids encoding GFP-tagged versions
of wild type Cdc6 (wtCdc6) or Cdc6 in which the N-terminal phosphorylation sites
were mutated to aspartic acid (DDD-Cdc6) or alanine (AAA-Cdc6). Forty-eight
hours later, the cells were harvested and lysates were analyzed by immunoblot-
ting with antibodies against Cdc6 or glyceraldehyde-3 phosphate dehydrogen-
ase (GPDH) as a loading control. D, duplicate samples of the lysates described in
B, from cells co-transfected with Cdc6 and either luciferase control (Luc siRNA) or
PR70-1 (PR70) siRNAs were immunoblotted with anti-PR70 antibodies to confirm
knockdown of PR70.
Em
pty
 Vec
tor
Cdc6 + CDK2
Cdc6
Cdc6 + PR70EF1/2
Cdc6 + PR70
∆C
Cdc6 + PR70
∆N3
Cdc6 + PR70
FLAG-PR70
Myc-CDK2
Actin
Em
pt
y V
ect
or
DDD-Cdc
6 + PR7
0
DDD-Cdc
6
AAA-Cdc
6 +
 PR70
AAA-Cdc
6
wtCdc
6 + PR
70
wtCdc
6
A
B
GFP-Cdc6
Endo-Cdc6
GFP-Cdc6
FLAG-PR70
Actin
Endo-Cdc6
FIGURE 8. Overexpression of PR70 increases the levels of Cdc6. A, U2OS
cells were transfected with empty vector, or plasmids encoding GFP-Cdc6
(Cdc6), myc-tagged CDK2 (CDK2), or FLAG-tagged constructs of wild-type
PR70 (PR70) or the indicated PR70 mutants. Cells were harvested 24 h after
transfection, and lysates were analyzed by immunoblotting with antibodies
against Cdc6, actin, FLAG, or myc as indicated at the right. The Cdc6 antibod-
ies detected both the expressed Cdc6 (GFP-Cdc6) and endogenous Cdc6
(Endo-Cdc6). B, U2OS cells were co-transfected with empty vector or plasmids
expressing FLAG-PR70 and plasmids expressing GFP-tagged versions of wild-
type Cdc6 (wtCdc6), or the AAA (AAA-Cdc6), or DDD (DDD-Cdc6) triple phos-
phorylation site mutants of Cdc6. Cells were harvested 24 h later, and lysates
were analyzed by immunoblotting with antibodies against Cdc6, actin, or the
FLAG epitope as indicated at the right.
PR70 Targets PP2A to Cdc6
JUNE 6, 2008 • VOLUME 283 • NUMBER 23
JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY
16111
 at Centro Nacional de Investigaciones Oncológicas, on May 28, 2010
www.jbc.org
Downloaded from 
http://www.jbc.org/content/suppl/2008/04/09/M710313200.DC1.html
Supplemental Material can be found at: